Western blot经验大盘点，有这一篇就够了纽普生物

Western blot(蛋白印迹)作为科研研究中最为平常的实验，却蕴含了很多知识，可谓是小实验里却有大文章。尽管绝大多数研究僧在接触该实验时都会被虐的体无完肤，却也在和WB斗志斗勇的过程中积累了不少经验。正所谓前人种树，后人乘凉，现在小鱼就把各位前辈做WB的各种经验总结起来，希望对大家能有所帮助。

WB的基本原理

在电场的作用下将电泳分离的多肽从聚丙烯酰胺凝胶转移至一种固相支持体，然后用这种多肽的特异抗体来检测，经常用于目的蛋白的表达特性分析、组织定位、表达量分析及与其他蛋白的互作。依其原理，可分为两种方法：A、直接法和B、间接法。

两种的方法的优缺点比较：

WB的一般流程：

1. 蛋白的提取

好的蛋白是WB成功的一半

经验总结：

1：合适的盐浓度下，保持蛋白质的最大溶解性和可重复性。

2：尽量除去核酸，多糖，脂类等干扰分子

3：提取蛋白质过程中，应在低温环境下进行，以抑制蛋白酶的水解作用（可加入适合的蛋白酶抑制剂）。

4：蛋白样品建议分装后冷冻干燥或直接以液体态置-80℃中保存，不要反复冻融。

5：蛋白浓度低时，可使用超滤膜浓缩或者用真空冻干机将蛋白冻干。

2. 电泳

凝胶浓度与蛋白分离范围

经验总结：

1：上样时：根据蛋白表达丰度调整蛋白上样量，尽量保证每孔上样量保持一致。

2：胶最好现配现用，如果需要保存，最好用湿润的保鲜膜包好并置于4℃冰箱中。

3：为了检测整个实验系统或校准实验结果，需要设置内参（一般指由管家基因编码表达的蛋白）。

4：为了确保western blot结果的准确性和特异性，设置合适正确的对照是必不可少，一般需要设置的对照如下——

阳性对照：明确表达检测蛋白的组织或细胞，用于检测抗体的工作效率；

阴性对照：明确不表达检测蛋白组织或细胞，用于检测抗体的特异性；

二抗对照：不加一抗，用于检测二抗的特异性；

内参对照：检测标本的质量和二抗系统

空白对照：不加一抗和二抗；用于检测膜的性质和封闭的效果。

3. 转膜（western blot成败的关键）

用于western blot的杂交膜主要有两种：NC膜和PVDF膜，可依据目的蛋白与膜的结合能力及膜的孔径来挑选不同的转移膜。

两个膜之间的比较：

转膜方法：分为两种湿转法和半干法

经验总结：

1：胶在负极，膜靠近正极；滤纸不要大过膜，防止短路；

2：夹好膜和凝胶后，确定在凝胶、膜和滤纸之间没有气泡存在，否则会导致转膜不完全。

3：注意一定要戴手套或塑料镊子接触膜，避免手上的蛋白和油脂降低转膜效率。

4：转膜过程中，尤其是高电流快速转膜时，通常会有非常严重的发热现象，最好把转膜槽放置在冰浴中进行转膜。

5：对于湿转法：一般转膜的电流在200mA-400mA之间，转膜时间为30-60分钟。也可以在15-20mA转膜过夜。大片段的>50KD的可以选用350mA,小片段的可以用250mA。具体的转膜时间要根据目的蛋白的大小而定，目的蛋白的分子量越大，需要的转膜时间越长，目的蛋白的分子量越小，需要的转膜时间越短。