我们所展示的质粒图谱主要是从文献和开放数据库中收集而来,主要是为了方便研究工作,其中一小部分质粒进行了质量控制,可供科学家使用。
所有的产品都严格仅供科学研究使用,不能应用于临床试验,包括人体摄入、注射或外用的药理学用途。
确保质粒的关键元件正确,但是我们并不能保证实验结果。页面展示的图谱序列为理论序列,可能与测序结果不一致,请自行比对后确定是否满足要求。(如果测过序,本页面一般会提供下载)
开放数据库中的大多数载体序列都没有被完全测序。如果实际序列与参考序列的相似度超过99%,则将其视为正确。
由于科学研究是在探索未知,具有很大的不确定性,在任何情况下,我们都不承担超出质粒本身的额外经济损失或责任。
- 载体名称:
- pIRES2 DsRed-Express2
- 载体抗性:
- Kanamycin
- 载体长度:
- 5265 bp
- 载体类型:
- Mammalian Expression Vectors
- 复制子:
- ori
- 载体来源:
- Clontech
- 筛选标记:
- Neomycin/G418(Geneticin)
- 拷贝数:
- High copy number
pIRES2 DsRed-Express2 载体图谱
质粒操作方法
1. 发货形式:质粒干粉(常温运输,存于-20度,请务必先转化提质粒后使用)
2. 收到质粒干粉后请先5000rpm离心1min,再加入20μl ddH2O溶解质粒;(质粒复测的浓度有时候与标称值差距较大,这可能是因为冻干质粒在管中的位置、复溶效率、测量偏差以及管壁的吸附导致,因此建议先转化提质粒后再使用)
3. 取1支100μl 感受态于冰上解冻10min,加入2μl质粒,再冰浴30min后,42℃热激60s,不要搅动,再冰浴2min;
4. 加入900μl无抗的LB液体培养基,180rpm震荡37℃培养45min (30℃培养1-1.5小时);
5. 6000rpm离心5min,仅留100μl上清液重悬细菌沉淀,并涂布至目标质粒抗性的LB平板上;
6. 将平板倒置37℃培养14h,如果要求是30℃则培养20h; (菌落过多则将质粒稀释后再转化;没有菌落则加入10μl质粒转化;建议不要直接转表达感受态, 要先转克隆感受态,重提质粒后再导入表达感受态);
7. 挑取单菌落至LB液体培养基中,加入对应抗生素,220rpm震荡培养14h,根据实验需要和质粒提取试剂盒说明书提取质粒。
pIRES2 DsRed-Express2 载体序列
LOCUS 40924_25676 5265 bp DNA circular SYN 01-JAN-1980
DEFINITION IRES-containing bicistronic vector for expressing a gene together
with the fluorescent protein DsRed-Express2.
ACCESSION .
VERSION .
KEYWORDS .
SOURCE synthetic DNA construct
ORGANISM synthetic DNA construct
REFERENCE 1 (bases 1 to 5265)
AUTHORS Clontech
TITLE Direct Submission
REFERENCE 2 (bases 1 to 5265)
AUTHORS .
TITLE Direct Submission
COMMENT SGRef: number: 1; type: "Journal Article"
COMMENT The gene inserted into the MCS should contain start and stop codons.
FEATURES Location/Qualifiers
source 1..5265
/mol_type="other DNA"
/organism="synthetic DNA construct"
enhancer 61..364
/label=CMV enhancer
/note="human cytomegalovirus immediate early enhancer"
promoter 365..568
/label=CMV promoter
/note="human cytomegalovirus (CMV) immediate early
promoter"
misc_feature 600..665
/label=MCS
/note="multiple cloning site"
misc_feature 667..1253
/label=IRES2
/note="internal ribosome entry site (IRES) of the
encephalomyocarditis virus (EMCV)"
CDS 1254..1928
/codon_start=1
/label=DsRed-Express2
/note="noncytotoxic tetrameric variant of DsRed fluorescent
protein (Strack et al., 2008)"
/translation="MDSTENVIKPFMRFKVHMEGSVNGHEFEIEGEGEGKPYEGTQTAK
LQVTKGGPLPFAWDILSPQFQYGSKVYVKHPADIPDYKKLSFPEGFKWERVMNFEDGGV
VTVTQDSSLQDGTFIYHVKFIGVNFPSDGPVMQKKTLGWEPSTERLYPRDGVLKGEIHK
ALKLKGGGHYLVEFKSIYMAKKPVKLPGYYYVDSKLDITSHNEDYTVVEQYERAEARHH
LFQ"
polyA_signal 2053..2174
/label=SV40 poly(A) signal
/note="SV40 polyadenylation signal"
rep_origin complement(2181..2636)
/direction=LEFT
/label=f1 ori
/note="f1 bacteriophage origin of replication; arrow
indicates direction of (+) strand synthesis"
promoter 2663..2767
/label=AmpR promoter
promoter 2769..3126
/label=SV40 promoter
/note="SV40 enhancer and early promoter"
CDS 3161..3952
/codon_start=1
/label=NeoR/KanR
/note="aminoglycoside phosphotransferase"
/translation="MIEQDGLHAGSPAAWVERLFGYDWAQQTIGCSDAAVFRLSAQGRP
VLFVKTDLSGALNELQDEAARLSWLATTGVPCAAVLDVVTEAGRDWLLLGEVPGQDLLS
SHLAPAEKVSIMADAMRRLHTLDPATCPFDHQAKHRIERARTRMEAGLVDQDDLDEEHQ
GLAPAELFARLKASMPDGEDLVVTHGDACLPNIMVENGRFSGFIDCGRLGVADRYQDIA
LATRDIAEELGGEWADRFLVLYGIAAPDSQRIAFYRLLDEFF"
polyA_signal 4187..4234
/label=HSV TK poly(A) signal
/note="herpes simplex virus thymidine kinase
polyadenylation signal (Cole and Stacy, 1985)"
rep_origin 4563..5151
/direction=RIGHT
/label=ori
/note="high-copy-number ColE1/pMB1/pBR322/pUC origin of
replication"