巨噬细胞属免疫细胞，有多种功能，是研究细胞吞噬、细胞免疫和分子免疫学的重
要对象。巨噬细胞容易获得，便于培养，并可进行纯化。但属不繁殖型细胞群，难以长
期生存，好的条件下仅能生活2~3 周，因之多用作初代培养。巨噬细胞也能建成无限
细胞系；大多来自小鼠，如P388D-1、J774A.1、RAW309、Cr.1 等，均已获恶性。培养
中的巨噬细胞仍保留着原有形态特点和吞噬异物功能，并易于传代和从培养瓶壁分离，
但却难以建立成为传代细胞系。
一、培养技术要点
2. 纯化和分离
从各种来源和用各种方法所获的巨噬细胞群中，多混有其它细胞成 分，如淋巴细胞、中性细胞、血小板和成纤维细胞等，应把它们分离出去。附着分离法 比较实用，原理是借用大多数单核巨噬细胞有极易附着于玻璃表面的特性，在先把细胞 群置于玻璃培养容器中数小时后，巨噬细胞能最先附着于玻璃表面，此时再用培养液或 PBS 冲洗掉尚未附着的中性粒细胞和激活的T 淋巴细胞等，剩余巨噬细胞纯度可达95 %。 如中性粒细胞也附着，可继续延长时间至24 小时，此时大多数巨噬细胞都已附着于瓶 壁，而中性粒细胞可变性死亡。继之再从瓶壁上把巨噬细胞分离下来进行培养，便获得 纯净巨噬细胞。
巨噬细胞对胰蛋白酶和EDTA均不敏感，不易使之离壁，必要时可用胶刮刮除，但 可能损伤细胞。用不加防腐剂的纯利多卡因处理（干液为PBS配的360 mM液，用1 N NaOH 调节pH值到6.6，同时稀释成12 mM浓度），加入培养基中，37 ℃作用5 分钟，可使巨噬 细胞变圆，此时稍加吹打，即可使细胞分离。注意要控制好作用的时间，以免细胞丢失。
3. 培养条件
据实验目的不同，可选用各种培养基：如199（加新鲜谷氨酰胺加青 链霉素）；NCTC-135；RPMI 1640；Ham12等均适于巨噬细胞培养。大多数巨噬细胞培养 可加10 %~40 %的血清，小鼠巨噬细胞加10 %小牛血清，用无血清培养基亦可。新生小牛 血清中含有抗体，能刺激巨噬细胞成熟。也可用乳清蛋白培养。巨噬细胞适于CO 2 温箱 培养，pH7.2，细胞接种密度以2~4×10 5 /cm 2 为宜。
4. 生物性状和鉴别
培养中的巨噬细胞在很多方面与淋巴细胞或其它白细胞相似， 应严加区别。正常巨噬细胞能附着瓶壁，胞质延展，细胞大小介于10~50 微米之间， 胞核呈特有的肾形，胞质有皱褶，细胞群多时能连接成单层；有时细胞呈多角形并连接 成网状。巨噬细胞对胰蛋白酶有抵抗性，借此可下其它细胞相区别，也是淘汰其它细胞 的方法。单核巨噬细胞胞质中含有丰富的非特异性脂酶，并具有C3b和FC表面受体。 巨噬细胞对培养环境敏感，很易发生与在体内时很大不同的改变；有强烈的吞噬活动。 如向培养环境中加入淀粉粒、乳胶粒、红细胞及调理素（或新鲜血清、特异抗体）等， 可见巨噬细胞能吞噬五个以上的颗粒。
细胞状态不良时，胞质常不延展，胞体变圆，不透明，或脱离瓶壁飘浮在培养液中 和失去吞噬能力。
1. 来源和取材
巨噬细胞可来源于人胸水、腹水、血和透析液等材料。实验多从动
物血液、肺、脾和胸腹腔获取，其中以从动物腹腔取材最常用。在不加任何刺激物自然
情况下，一个小鼠腹腔中，就含有2~3×10
6
个细胞，而且大多无炎症反应，冲先出来
即可用于培养。如欲获取多量巨噬细胞，可于取材3~5 天前，向动物腹腔中注射刺激
物，便能获得大量细胞。刺激物种类很多，如牛血清、矿物油、硫羟乙酸盐肉汤等，均
能刺激产生大量巨噬细胞；缺点是很多刺激物能激活吞唾细胞并被其吞噬，进行培养以
后，刺激物常不能很快被消化掉，残留在细胞内，能干扰细胞代谢。用40 μg的PHA注
入腹腔中，能产生6~8×10
6
个细胞，而且无刺激性，效果较好。从500 ml血中能获取
10
8
个单核细胞，但易杂以血小板及其它白细胞，尚需做进一步的分离和纯化。
2. 纯化和分离
从各种来源和用各种方法所获的巨噬细胞群中，多混有其它细胞成 分，如淋巴细胞、中性细胞、血小板和成纤维细胞等，应把它们分离出去。附着分离法 比较实用，原理是借用大多数单核巨噬细胞有极易附着于玻璃表面的特性，在先把细胞 群置于玻璃培养容器中数小时后，巨噬细胞能最先附着于玻璃表面，此时再用培养液或 PBS 冲洗掉尚未附着的中性粒细胞和激活的T 淋巴细胞等，剩余巨噬细胞纯度可达95 %。 如中性粒细胞也附着，可继续延长时间至24 小时，此时大多数巨噬细胞都已附着于瓶 壁，而中性粒细胞可变性死亡。继之再从瓶壁上把巨噬细胞分离下来进行培养，便获得 纯净巨噬细胞。
巨噬细胞对胰蛋白酶和EDTA均不敏感，不易使之离壁，必要时可用胶刮刮除，但 可能损伤细胞。用不加防腐剂的纯利多卡因处理（干液为PBS配的360 mM液，用1 N NaOH 调节pH值到6.6，同时稀释成12 mM浓度），加入培养基中，37 ℃作用5 分钟，可使巨噬 细胞变圆，此时稍加吹打，即可使细胞分离。注意要控制好作用的时间，以免细胞丢失。
3. 培养条件
据实验目的不同，可选用各种培养基：如199（加新鲜谷氨酰胺加青 链霉素）；NCTC-135；RPMI 1640；Ham12等均适于巨噬细胞培养。大多数巨噬细胞培养 可加10 %~40 %的血清，小鼠巨噬细胞加10 %小牛血清，用无血清培养基亦可。新生小牛 血清中含有抗体，能刺激巨噬细胞成熟。也可用乳清蛋白培养。巨噬细胞适于CO 2 温箱 培养，pH7.2，细胞接种密度以2~4×10 5 /cm 2 为宜。
4. 生物性状和鉴别
培养中的巨噬细胞在很多方面与淋巴细胞或其它白细胞相似， 应严加区别。正常巨噬细胞能附着瓶壁，胞质延展，细胞大小介于10~50 微米之间， 胞核呈特有的肾形，胞质有皱褶，细胞群多时能连接成单层；有时细胞呈多角形并连接 成网状。巨噬细胞对胰蛋白酶有抵抗性，借此可下其它细胞相区别，也是淘汰其它细胞 的方法。单核巨噬细胞胞质中含有丰富的非特异性脂酶，并具有C3b和FC表面受体。 巨噬细胞对培养环境敏感，很易发生与在体内时很大不同的改变；有强烈的吞噬活动。 如向培养环境中加入淀粉粒、乳胶粒、红细胞及调理素（或新鲜血清、特异抗体）等， 可见巨噬细胞能吞噬五个以上的颗粒。
细胞状态不良时，胞质常不延展，胞体变圆，不透明，或脱离瓶壁飘浮在培养液中 和失去吞噬能力。
培养巨噬细胞可用各种方法和各种来源获取细胞，其中以小鼠腹腔取材法最为实
用。人的材料除来源不同外，培养方法大同小异。
2. 引颈杀死动物；手提鼠尾将全鼠浸入70 %酒精中3~5 秒；
3. 置动物于解剖台上，用针头固定四肢，双手持镊撕开皮肤拉向两侧，暴露出 腹膜，但勿伤及腹膜壁；
4. 再用70 %酒精擦洗腹膜壁后，用注射器吸10 ml Eagle液注入腹腔中，同时从 两侧用手指揉压腹膜壁，令液体在腹腔内充分流动；
5. 用针头轻轻挑起腹壁，使动物体微倾向一侧，使腹腔中液体集于针头下吸取 入针管内；
6. 小心拔出针头，把液体注入离心管中，250 g（4 ℃）离心10 分钟后，去上清， 加10 ml Eagle培养基；
7. 计数细胞，每只小鼠可产生20~30×10 6 细胞，其中90 %为巨噬细胞；
8. 为获取3×10 5 个贴附细胞/平方厘米，需接种2.5×10 6 /ml；
9. 为纯化培养细胞，去除其它白细胞，接种数小时后，去除培养液，用Eagle 液冲洗1~2 次后，再加新Eagle培养液置37 ℃CO 2 温箱中培养。
1. 实验前三天，向每只小鼠腹腔内注入无菌硫羟乙酸肉汤1 ml（勿注入肠内）；
2. 引颈杀死动物；手提鼠尾将全鼠浸入70 %酒精中3~5 秒；
3. 置动物于解剖台上，用针头固定四肢，双手持镊撕开皮肤拉向两侧，暴露出 腹膜，但勿伤及腹膜壁；
4. 再用70 %酒精擦洗腹膜壁后，用注射器吸10 ml Eagle液注入腹腔中，同时从 两侧用手指揉压腹膜壁，令液体在腹腔内充分流动；
5. 用针头轻轻挑起腹壁，使动物体微倾向一侧，使腹腔中液体集于针头下吸取 入针管内；
6. 小心拔出针头，把液体注入离心管中，250 g（4 ℃）离心10 分钟后，去上清， 加10 ml Eagle培养基；
7. 计数细胞，每只小鼠可产生20~30×10 6 细胞，其中90 %为巨噬细胞；
8. 为获取3×10 5 个贴附细胞/平方厘米，需接种2.5×10 6 /ml；
9. 为纯化培养细胞，去除其它白细胞，接种数小时后，去除培养液，用Eagle 液冲洗1~2 次后，再加新Eagle培养液置37 ℃CO 2 温箱中培养。