我们所展示的质粒图谱主要是从文献和开放数据库中收集而来,主要是为了方便研究工作,其中一小部分质粒进行了质量控制,可供科学家使用。
所有的产品都严格仅供科学研究使用,不能应用于临床试验,包括人体摄入、注射或外用的药理学用途。
确保质粒的关键元件正确,但是我们并不能保证实验结果。页面展示的图谱序列为理论序列,可能与测序结果不一致,请自行比对后确定是否满足要求。(如果测过序,本页面一般会提供下载)
开放数据库中的大多数载体序列都没有被完全测序。如果实际序列与参考序列的相似度超过99%,则将其视为正确。
由于科学研究是在探索未知,具有很大的不确定性,在任何情况下,我们都不承担超出质粒本身的额外经济损失或责任。
- 载体名称:
- pTC223
- 载体抗性:
- Kanamycin
- 载体长度:
- 17961 bp
- 载体类型:
- Gene knockout
- 复制子:
- ori
- 宿主:
- Plants
- 筛选标记:
- Neo/G418
- 启动子:
- AtU6-26
- 感受态:
- Stbl3
- 培养温度:
- 37℃
pTC223 载体图谱
质粒操作方法
1. 发货形式:质粒干粉(常温运输,存于-20度,请务必先转化提质粒后使用)
2. 收到质粒干粉后请先5000rpm离心1min,再加入20μl ddH2O溶解质粒;(质粒复测的浓度有时候与标称值差距较大,这可能是因为冻干质粒在管中的位置、复溶效率、测量偏差以及管壁的吸附导致,因此建议先转化提质粒后再使用)
3. 取1支100μl 感受态于冰上解冻10min,加入2μl质粒,再冰浴30min后,42℃热激60s,不要搅动,再冰浴2min;
4. 加入900μl无抗的LB液体培养基,180rpm震荡37℃培养45min (30℃培养1-1.5小时);
5. 6000rpm离心5min,仅留100μl上清液重悬细菌沉淀,并涂布至目标质粒抗性的LB平板上;
6. 将平板倒置37℃培养14h,如果要求是30℃则培养20h; (菌落过多则将质粒稀释后再转化;没有菌落则加入10μl质粒转化;建议不要直接转表达感受态, 要先转克隆感受态,重提质粒后再导入表达感受态);
7. 挑取单菌落至LB液体培养基中,加入对应抗生素,220rpm震荡培养14h,根据实验需要和质粒提取试剂盒说明书提取质粒。
pTC223 载体序列
LOCUS V016614 17961 bp DNA circular SYN 01-JAN-1980 DEFINITION Exported. ACCESSION V016614 VERSION V016614 KEYWORDS . SOURCE synthetic DNA construct ORGANISM synthetic DNA construct . REFERENCE 1 (bases 1 to 17961) AUTHORS . TITLE Direct Submission FEATURES Location/Qualifiers source 1..17961 /mol_type="other DNA" /organism="synthetic DNA construct" misc_feature 1..25 /label="LB T-DNA repeat" /note="left border repeat from nopaline C58 T-DNA" promoter 966..1311 /label="CaMV 35S promoter" /note="strong constitutive promoter from cauliflower mosaic virus" CDS 1345..5448 /label="Cas9" /note="Cas9 (Csn1) endonuclease from the Streptococcus pyogenes Type II CRISPR/Cas system" terminator 5492..5740 /label="HSP terminator" /note="efficient transcription terminator from the Arabidopsis thaliana heat shock protein 18.2 gene (Nagaya et al., 2010)" promoter 5785..6208 /label="AtU6-26" /note="Arabidopsis U6-26 gene promoter" misc_RNA 6228..6303 /label="gRNA scaffold" /note="guide RNA scaffold for the Streptococcus pyogenes CRISPR/Cas9 system" promoter 7452..7635 /label="NOS promoter" /note="nopaline synthase promoter" CDS 7699..8487 /label="NeoR/KanR" /note="aminoglycoside phosphotransferase" polyA_signal 8516..8690 /label="CaMV poly(A) signal" /note="cauliflower mosaic virus polyadenylation signal" promoter 8901..9246 /label="CaMV 35S promoter" /note="strong constitutive promoter from cauliflower mosaic virus" CDS complement(10435..11310) /note="Replication-associated protein A from Bean yellow dwarf virus. Accession#: O39521" /label="Replication-associated protein A" misc_feature 11684..11708 /label="RB T-DNA repeat" /note="right border repeat from nopaline C58 T-DNA" CDS 13008..13634 /label="pVS1 StaA" /note="stability protein from the Pseudomonas plasmid pVS1 (Heeb et al., 2000)" CDS 14071..15135 /label="pVS1 RepA" /note="replication protein from the Pseudomonas plasmid pVS1 (Heeb et al., 2000)" rep_origin 15204..15398 /label="pVS1 oriV" /note="origin of replication for the Pseudomonas plasmid pVS1 (Heeb et al., 2000)" misc_feature 15742..15882 /label="bom" /note="basis of mobility region from pBR322" rep_origin complement(16068..16656) /direction=LEFT /label="ori" /note="high-copy-number ColE1/pMB1/pBR322/pUC origin of replication" CDS complement(16746..17537) /label="KanR" /note="aminoglycoside phosphotransferase"