1.  稀释涂布平板法

（1）倒平板将肉膏蛋白胨培养基、高氏1号琼脂培养基、马丁氏琼脂培养基溶化，待冷至55~60℃时，向高氏1号琼脂培养基中加入10%酚数滴，向马丁氏培养基中加入链霉素溶液，使每毫升培养基中含链霉素30 μg。

然后分别倒平板，每种培养基倒三皿，其方法是右手持盛培养基的试管或三角烧瓶，置火焰旁边，左手拿平皿并松动试管塞或瓶塞，用手掌边缘和小指、无名指夹住拔出，如果试管内或三角烧瓶内的培养基一次可用完，则管塞或瓶塞不必夹在手指中。

试管（瓶）口在火焰上灭菌，然后左手将培养皿盖在火焰附近打开一缝，迅速倒入培养基约15 ml，加盖后轻轻摇动培养皿，使培养基均匀分布，平置于桌面上，待凝后即成平板。也可将平皿放在火焰附近的桌面上，用左手的食指和中指夹住管塞并打开培养皿，再注入培养基，摇匀后制成平板。最好是将平板放室温2~3天，或37℃培养24小时，检查无菌落及皿盖无冷凝水后再使用。

（2）制备土壤稀释液称取土样10 g，放入盛90 ml 无菌水并带有玻璃珠的三角烧瓶中，振摇约20分钟，使土样与水充分混合，将菌分散。用一支1 ml 无菌吸管从中吸取1 ml 土壤悬液注入盛有9 ml 无菌水的试管中，吹吸三次，使充分混匀。然后再用一支1 ml 无菌吸管从此试管中吸取1 ml 注入另一盛有9 ml 无菌水的试管中，以此类推制成10 ^-1 、10 ^-2 、10 ^-3 、10 ^-4 、10 ^-5 、10 ^-6 各种稀释度的土壤溶液。

（3）涂布将上述每种培养基的三个平板底面分别用记号笔写上10 ^-4 、10 ^-5 和10 ^-6 三种稀释度，然后用三支1 ml 无菌吸管分别由10 ^-4 、10 ^-5 和10 ^-6 三管土壤稀释液中各吸取0.2 ml 对号放入已写好稀释度的平板中，用无菌玻璃涂棒在培养基表面轻轻地涂布均匀。

（4）培养将高氏1号培养基平板和马丁氏培养基平板倒置于28℃温室中培养3~5日，肉膏蛋白胨平板倒置于37℃温室中培养2~3日。

（5）挑菌将培养后长出的单个菌落分别挑取接种到上述三种培养基的斜面上，分别置28℃和37℃温室中培养，待菌苔长出后，检查菌苔是否单纯，也可用显微镜涂片染色检查是否是单一的微生物，若有其他杂菌混杂，就要再一次进行分离、纯化，直到获得纯培养。

2.  稀释混合平板法

此法与稀释涂布平板法基本相同，无菌操作也一样，所不同的是先分别吸取0.5 ml 10 ^-4 、10 ^-5 、10 ^-6 稀释度的土壤悬液对号放入平皿，然后再倒入溶化后冷却到45℃左右的培养基，边倒入边摇匀，使样品中的微生物与培养基混合均匀，待冷凝成平板后，分别倒置于28℃和37℃温室中培养后，再挑取单个菌落，直至获得纯培养。

3.  平板划线分离法

（1）按稀释涂布平板法倒平板，并用记号笔标明培养基名称。

（2）划线在近火焰处，左手拿皿底，右手拿接种环，挑取上述10 ^-1 的土壤悬液一环在平板上划线。划线的方法很多，但无论哪种方法划线，其目的都是通过划线将样品在平板上进行稀释，使形成单个菌落。

常用的划线方法有下列二种：

①用接种环以无菌操作挑取土壤悬液一环，先在平板培养基的一边作第一次平行划线3~4条，再转动培养皿约70°角，并将接种环上剩余物烧掉，待冷却后通过第一次划线部分作第二次平行划线，再用同法通过第二次平行划线部分作第三次平行划线和通过第三次平行划线部分作第四次平行划线。划线完毕后，盖上皿盖，倒置于温室培养。

②将挑取有样品的接种环在平板培养基上作连续划线。划线完毕后，盖上皿盖，倒置温室培养。

（3）挑菌同稀释涂布平板法，一直到菌分纯为止。