1. 将酵母菌接种于YPD培养基（100 ml 到20 L），剧烈摇动或强制通气条件下培养至对数中期（OD
600
≈1~5）。培养物在预称重的离心瓶中于4℃， 1 500 g 离心5 min。
2. 确定酵母细胞的湿重，它与压紧的细胞体积大致相同。在所有的后续步骤中菌体的量将当作1体积来考虑。
3. 细胞用2~4体积冰水重悬，并立即于4℃，1 500 g 离心5 min，加入1体积含30 mmol/l DTT的酵母消解酶缓冲液重悬细胞、室温放置15 min。
4. 于4℃，1 500 g 离心5 min，菌体用3体积的酵母消解酶缓冲液重悬。
5. 在每毫升原压紧细胞中加入2 mg（200 U）酵母消解酶-100T，于30℃水平摇床以大约50 r/min 的转速温育40 min，通过水渗破法确定菌体是否完全转变为原生质体，如果原生质体化不完全，应继续温育直到完全。
6. 1 500 g 离心原生质体5 min，小心弃上清，原生质体球沉淀块不如细胞沉淀块般紧密。
7. 用2体积冰冷的酵母消解酶缓冲液轻轻重悬沉淀，原生质体1 500 g 离心5 min，重复2次。
8. 用2体枳酵母消解酶缓冲液轻轻重悬沉淀，不要试图得到均一的悬液，只需将沉淀物从管壁上洗下来，悬转10~20次，于1 500 g 离心10 min回收原生质体。
9. 用玻璃棒仔细将原生质体沉淀重悬于1体积裂解缓冲液中。
9. 用玻璃棒仔细将原生质体沉淀重悬于1体积裂解缓冲液中。
10. 在Dounce 匀浆器中用最紧密的研杵，冲击15~20次以裂解原生质体。
11. 往超离心管中加入一半管体积原生质体裂解液，再加等体积的抽提缓冲液，将离心管封口。于4℃在旋转轮或摇床上轻轻倒转离心管15~30 min。
11. 往超离心管中加入一半管体积原生质体裂解液，再加等体积的抽提缓冲液，将离心管封口。于4℃在旋转轮或摇床上轻轻倒转离心管15~30 min。
12. 于4℃，45Ti 转子上100 000 g 离心90 min。收集上清，在100体积贮存缓冲液中透析2~4 h。将透析袋转移到100体积新鲜的贮存缓冲液中，再透析2~4 h。
13. 取出几微升透析液，用水作1 ：1 000稀释，测定电导率。如果和类似稀释度的贮存缓冲液相等或低于一定值时（通常100~250 mmol/l NaCl），继续步骤14，否则继续透析。
14. 于4℃，10 000 g 离心10 min。收集透析液上清。分成小份放在液氮中冷冻，于 -80℃贮存。