一、实验动物的处死方法
1.较大动物的处死方法以下几种方法适用于豚鼠、猫、兔、狗等较大或更大一点的动物。
（1）空气栓塞法：将空气注入动物静脉，使之很快栓塞而死。当空气注入静脉后，可在右心随着心脏的跳动使空气与血液相混致血液成泡沫状，随血液循环到全身。如进入肺动脉，可阻塞其分支，进入心脏冠状动脉，造成冠状动脉阻塞，发生严重的血液循环障碍，动物很快致死。一般兔、猫等需注入20～40ml。狗需注入80～150ml。这是最常用的一种方法。
（2）急性失血法：①一次性抽取大量心脏血液，可使动物很快致死。②狗可采用股动、静脉放血法。给狗按每千克体重静脉注射硫喷妥纳20～30mg，动物麻醉后，暴露股三角区，用利刀在股三角区作一个约10cm的横切口，把股动、静脉全切断，血立即喷出。用一块湿纱布不断擦去股动脉切口周围处的血液和血凝块，同时不断地用自来水冲洗流血，使股动脉切口保持畅通，动物3～5min内即死亡。
（3）破坏延脑法：如果急性实验后，脑已暴露，可用器具将延髓破坏，导致动物死亡。对家兔可用木槌或手击其后脑部，损坏延脑，造成死亡。
（4）开放性气胸法：将动物开胸，造成开放性气胸。这时胸膜腔的压力与大气压力相等，肺脏因受大气压缩发生肺萎陷，纵隔摆动，动物窒息而死。
（5）化学药物致死法：给动物的静脉内注入福尔马林溶液，使血液内蛋白凝固，导致全身血液循环严重障碍和缺氧而死。成年狗静脉内需注入10%福尔马林溶液20ml。
4%戊巴比妥作静脉注射（1mg/kg），或20%氨基甲酸乙酯（尿烷或乌拉坦作胸腔注射（5ml/kg）给动物的静脉内注入氯化钾溶液，使动物心肌失去收缩能力，心脏急性扩张，致心脏弛缓性停跳而死亡。成年兔静脉内需注入10%氯化钾溶液5～10ml；成年狗静脉内需注入20～30ml。
2.小动物的处死方法以下几种方法适用于大鼠、小鼠这类小动物。
（1）脊椎脱臼法：是将动物的颈椎脱臼，断开脊髓使动物致死。左手拇指与食指用力向下按住鼠头，右手抓住鼠尾用力向后拉，鼠便立即死亡。这是最常用的一种方法。
（2）急性大失血法：可将眼球摘除导致大量失血致死。
（3）击打法：右手抓住鼠尾提起，用力撞击其头部，鼠痉挛后立即死亡。用小木槌击打鼠头部也可致死。
（4）断头法：给小鼠断头时，可用左手拇指和食指夹住小鼠的肩胛部，固定。右手拿剪刀迅速将头剪断。给大鼠断头时，实验者应戴上棉纱手套，用右手握住大鼠头部，左手握住背部，露出颈部，助手用剪刀在鼠颈部将鼠头剪掉。
（5）可将浸有乙醚或氯仿的棉球连同小动物一起密封于玻璃容器内麻醉。
3.蛙类的处死方法常用金属探针插入枕骨大孔，破坏脑脊椎。左手用湿布将蛙包住，露出头部，并且用食指按压其头部前端，拇指按压背部，使头前俯；右手持探针由头前端沿中线向尾方刺入，触及凹陷处即枕骨大孔所在。进入枕骨大孔后将探针尖端转向头方，向前探入颅腔，然后向各方搅动，以捣毁脑组织。脑组织捣毁后，将探针退出，再由枕骨大孔刺入，转向尾方，与脊柱平行刺入椎管，以破坏脊髓。待蛙的四肢肌肉完全松弛后拔出探针，用干棉球将针孔堵住，以防止其出血。
如处死的是蟾蜍，在操作时要防止毒腺分泌物射入眼内。如被射入，立即用大量生理盐水冲洗眼睛。
二、实验后动物尸体的处理
1.实验中因正常死亡的动物，如：失血过多、创伤等，以及实验后处死的动物应装入垃圾袋内并交学校动物中心处理。注意实验动物禁止食用。
2.因传染病死亡的动物，应将尸体焚烧或掩埋（1m以下），或固定后投入粪池，腐烂发酵后作肥料。