Northern blot的基本概述是将RNA样品通过变性琼脂糖凝胶电泳进行分离,再转移至尼龙膜等固相膜载体上,用放射性或非放射性标记DNA或RNA特异性探针对固定于固相膜上的mRNA进行杂交,洗膜去除非特异性结合杂交信号,经放射自显影或现色反应,对杂交信号进行分析。将杂交的mRNA分子在电泳中迁移位置与标准分子量分子进行比较,即可知道细胞中特定的基因转录产物的大小;对杂交信号的强弱比较,可以知晓该基因表达mRNA水平的强弱。
一、RNA转移与固定
1. 变性琼脂糖电泳分离总RNA样品完成后,1×MOPS buffer淋洗凝胶片刻,10×SSC中浸泡平衡凝胶30 min。
2. 按southern blot实验中DNA转移方法及装置转移总RNA至尼龙膜上(过程中注意无RNA酶操作)。
3. 1×SSC淋洗尼龙膜后滤纸吸干,夹在2层干净滤纸中80℃烤箱烘烤2小时。
4. RNA染色,干燥的尼龙膜先于5%冰乙酸中室温浸泡15 min。
5. 于0.5 mol/L 乙酸钠和0.04%亚甲蓝溶液中浸泡5~10 min。
6. 去离子水淋洗膜5~10 min,可见RNA标准及28s及18 sRNA的条带,软铅笔标记。
5. 于0.5 mol/L 乙酸钠和0.04%亚甲蓝溶液中浸泡5~10 min。
6. 去离子水淋洗膜5~10 min,可见RNA标准及28s及18 sRNA的条带,软铅笔标记。
二、预杂交、杂交及显色
1. Washing buffer润洗1遍(3~5 min)。
2. 100 ml blocking buffer工作液封闭30 min。
3. 100 ml antibody buffer(1:5000)孵育30 min。
4. Washing buffer洗膜(15 min×2)。
5. 20 ml detection buffer 平衡2~5 min。
6. 将尼龙膜置于10 ml color-substrate solution 棕色瓶中,避光数min至1天(出现颜色时不要摇动)。
7. 当出现条带时,TE-buffer洗膜(5 min×1),终止现色。
7. 当出现条带时,TE-buffer洗膜(5 min×1),终止现色。
8. 照相记录,80℃烤干,储存。
9. 扫描计算EGFR基因扩增的倍数。
注意事项
1.
避免RNA酶污染,防止RNA降解。
2. 凝胶中最好不要加入EB,以免降低杂交的效率。
3. 为降低膜杂交本底,可适当延长预杂交时间。