融合蛋白的免疫筛选实验-基本方案

1.  在150 ml LB 平板上滴定λgt11 cDNA文库的滴度,宿主菌为大肠杆菌LE392菌株,每个平板使用7 ml 1%LB顶层琼脂。

2.  选择适当的滴度铺平板,于37℃温育8 h。

3.  将直径132 mm 硝酸纤维素滤膜分别编号,放入上述已培养8 h的平板中,于37℃温育过夜。
4.  用针头刺孔并用印度墨汁在每张滤膜上作一标记,然后取出滤膜。

5.  在室温用免疫筛选缓冲液洗膜30 min,以封闭滤膜并洗去膜上的残留细菌,重复洗涤2~4次。
6.  将第一抗体(稀释于免疫筛选缓冲液中,终浓度为0.5~10 μg/ml)加到装有滤膜的塑料袋中,热封口后置40℃水平摇床上反应2~24 h。
7.  于4℃用免疫筛选缓冲液洗膜4~5次,毎次5~10 min。

8.  接着将 125 I 标记的第二抗体(0.5×10 6 cpm/ml)加入装有滤膜的热封塑料袋中,4℃反应2~6 h。

9.  在4℃用免疫筛选缓冲液洗膜4~5次,然后用滤纸将滤膜上的液体吸干。

10.  用塑料保鲜膜包裹好滤膜,使用增感屏在-70℃对X光片曝光。
11.  通过反复稀释,纯化λ噬菌体cDNA融合蛋白克隆,最终获得单一的阳性克隆。

12.  培养阳性克隆,制备重组λ噬菌体DNA。

2014-12-12