Percoll是一种包有乙烯吡咯烷酮的硅胶颗粒。渗透压很低（<20 mosm/kg H
2
O）， 粘度也很小，可形成高达1.3 g/ml密度，采用预先形成的密度梯度时可在低离心
力（200～1000 g）于数分至数十分钟内达到满意的细胞分离结果。由于Percoll扩散常数
低，所形成的梯度十分稳定。此外，Percoll不穿透生物膜，对细胞无毒害，因此广
泛用于分离细胞、亚细胞成分、细菌及病毒，还可将受损细胞及其碎片与完好的活
细胞分离。
一、分离纯化细胞举例
2. 纯化淋巴母细胞和除去死细胞
分别叠加50 ％和30 ％Percoll液。收取经PHA（ 或其它抗原、有丝分裂原）刺激PBMC，或含有较高比例异型的PBMC（如肾综合征出 血热患者），按要求装样、离心和取样。位于管底的淋巴细胞为小淋巴细胞；两层 Fercoll之间为淋巴母细胞，纯度和回收率在80％以上，位于30 ％Percoll表面是死细 胞。收获淋巴母细胞可进行表型、结构以及功能的研究。
二、人不同血细胞的漂浮密度
1. 富含NK活性大颗粒淋巴细胞（LGL）的纯化
按顺序由下向上逐层加50 ％、
47.5 ％、45 ％、42.5 ％和40 ％五种不同密度的Percoll，如用10 ml试管（或塑料管）分离，每 层Percoll约1.2～1.5 ml，初步从外周血中分离的PBMC细胞1×10 8 悬于1 ml培基中， 按要求装样、离心和取样。一般富含NK杀伤活性的LGL细胞位于42.5％与45％Percoll 界面以及上下二层的Percoll液中。2. 纯化淋巴母细胞和除去死细胞
分别叠加50 ％和30 ％Percoll液。收取经PHA（ 或其它抗原、有丝分裂原）刺激PBMC，或含有较高比例异型的PBMC（如肾综合征出 血热患者），按要求装样、离心和取样。位于管底的淋巴细胞为小淋巴细胞；两层 Fercoll之间为淋巴母细胞，纯度和回收率在80％以上，位于30 ％Percoll表面是死细 胞。收获淋巴母细胞可进行表型、结构以及功能的研究。
二、人不同血细胞的漂浮密度
人不同血细胞的漂浮密度
细 胞 漂浮密度
红细胞 1.09-1.11
细 胞 漂浮密度
红细胞 1.09-1.11
粒细胞
嗜酸性 1.09-1.095
嗜中性 1.080-1.085
嗜酸性 1.09-1.095
嗜中性 1.080-1.085
单核细胞 1.050-1.066
血小板 1.030-1.060
淋巴细胞 1.052-1.077
B淋巴细胞 1.062-1.075
血小板 1.030-1.060
淋巴细胞 1.052-1.077
B淋巴细胞 1.062-1.075
T淋巴细胞 1.065-1.077
淋巴母细胞 1.065-1.077
自然杀伤细胞 1.050-1.070
淋巴母细胞 1.065-1.077
自然杀伤细胞 1.050-1.070
1. 不同浓度（密度）Percoll溶液的制备
先用9 份Percoll与1 份8.5 ％ NaCl或1.5 MPBS混 合达到生理性渗透压，然后用生理溶液（0.85 ％ NaCl或0.15 M PBS）稀释到所需浓度。
Percoll浓度（％） 70 60 50 40 30 20
2. 不连续密度梯度Percoll层的制备
先将试管壁用牛血清湿润，除去多余血清，这 种预处理可使逐层叠加的Percoll液平稳沿管壁流下，使形成满意的界面。在制备过 程中一般用长针头注射器从高密度向低密度逐层放置，有时相邻两层Percoll比重相 差不大时，可将Percoll液放入注射器中，小针头斜面紧贴管壁，任其自然慢慢流 下。
3. 装样
样品体积和细胞浓度根据不同细胞而异，一般加样体积不宜过大， 细胞浓度也不可过高，否则会影响细胞的分离和回收。
4. 离心
一般采用离心力为400 g，时间20～25 min。由于多层Percoll之间密度 差别不大，因此离心机加速、降速时要慢，要平稳。
5. 取样
当所要分离的细胞绝大部分在两层的界面时，可逐层去除Percoll液后收集界面部位的细胞；有时大部分细胞位于Percoll层中，则需要逐层收集。收获含有 Percoll液的细胞经2 次洗涤后可供培养或检测用。
先用9 份Percoll与1 份8.5 ％ NaCl或1.5 MPBS混 合达到生理性渗透压，然后用生理溶液（0.85 ％ NaCl或0.15 M PBS）稀释到所需浓度。
Percoll浓度（％） 70 60 50 40 30 20
比重（g/ml） 1.090 1.077 1.067 1.056 1.043 1.031
2. 不连续密度梯度Percoll层的制备
先将试管壁用牛血清湿润，除去多余血清，这 种预处理可使逐层叠加的Percoll液平稳沿管壁流下，使形成满意的界面。在制备过 程中一般用长针头注射器从高密度向低密度逐层放置，有时相邻两层Percoll比重相 差不大时，可将Percoll液放入注射器中，小针头斜面紧贴管壁，任其自然慢慢流 下。
3. 装样
样品体积和细胞浓度根据不同细胞而异，一般加样体积不宜过大， 细胞浓度也不可过高，否则会影响细胞的分离和回收。
4. 离心
一般采用离心力为400 g，时间20～25 min。由于多层Percoll之间密度 差别不大，因此离心机加速、降速时要慢，要平稳。
5. 取样
当所要分离的细胞绝大部分在两层的界面时，可逐层去除Percoll液后收集界面部位的细胞；有时大部分细胞位于Percoll层中，则需要逐层收集。收获含有 Percoll液的细胞经2 次洗涤后可供培养或检测用。