Western Blot是利用抗原抗体的免疫反应，先将蛋白通过SDS-PAGE凝胶电泳分离开，再利用电场力的作用将胶上的蛋白转移到固相载体上，然后再加上抗体形成抗原抗体复合物，再利用发光或显色的原理将结果显示到膜或者底片上。

大家在做WB实验时经常会遇到什么问题呢？现在由博海生物来为大家一一解答。

一、在western实验中，通常有人采用TBS，有人采用PBS，在使用中有什么区别？

选择合适的缓冲液对于维持一定PH值下蛋白质的稳定及保证实验的重复性是很重要的。PBS的缓冲能力强于TBS（因为混合缓冲液在一定的离子强度下常常具有更宽的缓冲范围）,TBS在PH7.0以下缓冲能力较弱（不过PBS易污染）。但我们常常要根据我们实验目的选用合适的缓冲液,如在蛋白纯化中进行阴离子交换层析，阳离子缓冲液首选TBS;阳离子交换层析时，阴离子缓冲液则首选PBS。

western blot中使用TBS和PBS均可,只是要根据需要选择合适的浓度。

二、没有注明可以用来做western blot的一抗，可以用来做western blot 吗？

不一定,因为有的抗体是识别线性表位的,有的是识别构象型表位的，识别构象型表位的抗体不能用于western blotting，因为在western blotting中抗体识别的是完全变性的蛋白质抗原，而蛋白质抗原的构象型表位变性时被破坏。

三、做western每次只加一种一抗，可以同时加两种或者多种一抗吗？

最好还是不要同时加两种一抗。因为如果结果里面有非特异信号的话，就说不清楚了。做Western在同一张膜上检测目的蛋白和内对照，也是先上目的蛋白的一抗、二抗，ECL显色、压片、洗片；漂洗以后，再上内对照的一抗、二抗，ECL显色、压片、洗片。

四、Western blot使用的膜哪种最好啊，PVDF好还是NC膜，如何选择？

VDF膜价格较贵，可重复使用，特别适合蛋白印迹，结合能力较强，但价格比较昂贵。 NC膜价格比较便宜，应用较广，结合牢固性差一些，韧性也不如PVDF，不能重复使用，但蛋白吸附容量高，亲水性较好。 都可以用丽春红染色。

五、为什么出现了多条带，每个加样槽中都出现了多条带，而且好像都很有规律，为什么？是封闭时间不够吗？做western必须要内参吗？

一抗、或二抗抗体浓度太高，多克隆抗体本身的非特异性反应，抗体的特异性不强，目的蛋白经过处理后发生变化,而内参的条带基本均匀一致.这样才有说服力,表明的确是处理因素造成目的蛋白的变化而不是加样误差或认为的造成目的条带浓度的变化.所以严格意义上说,内参是必须做的。

六、western用的一抗，单抗好些还是用多抗好些？用于western的抗体和用于ELISA的抗体有什么不同的要求？

作为western来讲，理论上单抗比多抗的特异性要好，但单抗种类较少一般价格偏高,所以一般来说多抗足够了。用于western的抗体和用于ELISA的抗体，一般来说用于western的抗体识别的是氨基酸序列特异性；而可用于ELISA的抗体则要看抗原种类,有些是识别氨基酸序列特异性,有些是识别构像特异性。所以一般根据抗体说明书来确定。做免疫印迹时选择抗体主要应考虑两个问题，一是所选抗体是否能识别凝胶电泳后转印至膜上的变性蛋白，另一个是所选抗体是否会引起交叉反应条带。

七、不能很好地将大分子量蛋白转移到膜上，转移效率低怎么样解决？

可以考虑：转移缓冲液中加入20%甲醇（是指终浓度）(优化的转移缓冲液,因为甲醇可降低蛋白质洗脱效率，但可增加蛋白质和NC膜的结合能力,甲醇可以防止凝胶变形，甲醇对高分子量蛋白质可延长转移时间;转移缓冲液加入终浓度0.1%SDS,也是为了增加转移效率；用优质的转移膜，或使用小孔径的NC膜（0.2微米）;使用戊二醛交联；低浓度胶,如低至6％。太大时还可以考虑用琼脂糖胶；提高转移电压／电流；增加转移时间。

八、Western Blot哪种染色好？

(1)：阴离子染料是较常用的,特别是氨基黑,脱色快,背景低检测极限可达到1.5μg,考马斯亮蓝虽然与氨基黑有相同的灵敏度,但脱色慢,背景高。丽春红S和快绿在检测后容易从蛋白质中除去,以便进行随后的氨基酸分析。缺点是:溶剂系统的甲醇会引起硝化纤维素膜的皱缩或破坏。不能用语正电贺的膜。灵敏度低。(2)：胶体金，灵敏度高,检测范围可到pg级,但染色比稳定。(3)：生物素化灵敏度位于1、2之间,可用于任何一种膜。

九、结合ECL之后显影发现胶片上的条带是空心的，而且荧光很快就没了？

一种情况是POD浓度高ECL很快被淬灭掉，导致蛋白丰度越高的地方反而没带，边缘地带反而有显色。

2016-06-15