我们所展示的质粒图谱主要是从文献和开放数据库中收集而来，主要是为了方便研究工作，其中一小部分质粒进行了质量控制，可供科学家使用。
所有的产品都严格仅供科学研究使用，不能应用于临床试验，包括人体摄入、注射或外用的药理学用途。
确保质粒的关键元件正确，但是我们并不能保证实验结果。页面展示的图谱序列为理论序列，可能与测序结果不一致，请自行比对后确定是否满足要求。(如果测过序，本页面一般会提供下载)
开放数据库中的大多数载体序列都没有被完全测序。如果实际序列与参考序列的相似度超过99%，则将其视为正确。
由于科学研究是在探索未知，具有很大的不确定性，在任何情况下，我们都不承担超出质粒本身的额外经济损失或责任。
- 载体名称:
- PB-U6-DR-SgRNA-DR-EF1a-mCherry-SV40
- 载体抗性:
- Ampicillin, Kanamycin
- 载体长度:
- 6255 bp
- 载体类型:
- Gene-editing vector
- 复制子:
- ori
- 宿主:
- Mammalian cells
- 启动子:
- U6, EF1a
- 5'引物:
- U6-F
- 感受态:
- Stable
- 培养温度:
- 37℃
PB-U6-DR-SgRNA-DR-EF1a-mCherry-SV40 载体图谱
质粒操作方法
1. 发货形式：质粒干粉(常温运输，存于-20度，请务必先转化提质粒后使用)
2. 收到质粒干粉后请先5000rpm离心1min，再加入20μl ddH2O溶解质粒;（质粒复测的浓度有时候与标称值差距较大，这可能是因为冻干质粒在管中的位置、复溶效率、测量偏差以及管壁的吸附导致，因此建议先转化提质粒后再使用）
3. 取1支100μl 感受态于冰上解冻10min，加入2μl质粒，再冰浴30min后，42℃热激60s，不要搅动，再冰浴2min；
4. 加入900μl无抗的LB液体培养基，180rpm震荡37℃培养45min (30℃培养1-1.5小时);
5. 6000rpm离心5min，仅留100μl上清液重悬细菌沉淀，并涂布至目标质粒抗性的LB平板上;
6. 将平板倒置37℃培养14h，如果要求是30℃则培养20h; (菌落过多则将质粒稀释后再转化；没有菌落则加入10μl质粒转化；建议不要直接转表达感受态， 要先转克隆感受态，重提质粒后再导入表达感受态);
7. 挑取单菌落至LB液体培养基中，加入对应抗生素，220rpm震荡培养14h，根据实验需要和质粒提取试剂盒说明书提取质粒。
PB-U6-DR-SgRNA-DR-EF1a-mCherry-SV40 载体序列
LOCUS . 6255 bp DNA circular UNK 01-JAN-1980
DEFINITION synthetic circular DNA.
ACCESSION
VERSION
KEYWORDS .
SOURCE .
ORGANISM .
.
FEATURES Location/Qualifiers
protein_bind 105..126
/label="CAP binding site"
/note="CAP binding activates transcription in the presence
of cAMP."
promoter 141..171
/label="lac promoter"
/note="promoter for the E. coli lac operon"
protein_bind 179..195
/label="lac operator"
/note="The lac repressor binds to the lac operator to
inhibit transcription in E. coli. This inhibition can be
relieved by adding lactose or
isopropyl-β-D-thiogalactopyranoside (IPTG)."
primer_bind 203..219
/label="M13 rev"
/note="common sequencing primer, one of multiple similar
variants"
promoter 593..833
/label="U6 promoter"
/note="RNA polymerase III promoter for human U6 snRNA"
misc_RNA 843..878
/label="RfxCas13d DR36"
/note="36-base direct repeat for an RfxCas13d pre-gRNA
(Konermann et al., 2018)"
promoter 1003..1214
/label="EF-1α core promoter"
/note="core promoter for human elongation factor EF-1α"
LTR 1227..1495
/label="5' LTR (truncated)"
/note="truncated 5' long terminal repeat (LTR) from human
T-cell leukemia virus (HTLV) type 1"
CDS 1529..2236
/label="mCherry"
/note="monomeric derivative of DsRed fluorescent protein
(Shaner et al., 2004)"
polyA_signal 2240..2361
/label="SV40 poly(A) signal"
/note="SV40 polyadenylation signal"
promoter complement(2687..2705)
/label="T7 promoter"
/note="promoter for bacteriophage T7 RNA polymerase"
primer_bind complement(2712..2728)
/label="M13 fwd"
/note="common sequencing primer, one of multiple similar
variants"
rep_origin 2869..3297
/label="f1 ori"
/note="f1 bacteriophage origin of replication; arrow
indicates direction of (+) strand synthesis"
CDS 3641..4432
/label="NeoR/KanR"
/note="aminoglycoside phosphotransferase"
CDS 4453..5310
/label="AmpR"
/note="β-lactamase"
rep_origin 5484..6072
/label="ori"
/note="high-copy-number ColE1/pMB1/pBR322/pUC origin of
replication"