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非标记抗体免疫电镜实验-快速法(琼脂扩散法)

标记抗体法虽然具有许多优点,但也存在一些难以克服的问题,如标记抗体的分子增大,对细胞膜和组织的穿透力减弱;化学交联反应对抗体和酶的活性有所影响;结合物中未标记的抗体可与抗原竞争结合,影响检测方法的敏感性等。不标记抗体法可以避免上述的不利影响因素,通过一系统的非标记抗体的免疫学反应,对组织中的抗原进行定位检测。不标记抗体法又可分为用标记物显示和不同标记物显示两种方法。前者利用基因工程方法制备双特异性抗体的F(ab′)2,一个Fab片段与标本中的抗原结合,一个Fab是抗体蛋白的结合片段...

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非标记抗体免疫电镜实验-经典法

标记抗体法虽然具有许多优点,但也存在一些难以克服的问题,如标记抗体的分子增大,对细胞膜和组织的穿透力减弱;化学交联反应对抗体和酶的活性有所影响;结合物中未标记的抗体可与抗原竞争结合,影响检测方法的敏感性等。不标记抗体法可以避免上述的不利影响因素,通过一系统的非标记抗体的免疫学反应,对组织中的抗原进行定位检测。不标记抗体法又可分为用标记物显示和不同标记物显示两种方法。前者利用基因工程方法制备双特异性抗体的F(ab′)2,一个Fab片段与标本中的抗原结合,一个Fab是抗体蛋白的结合片段...

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人脐静脉内皮细胞(HUVEC)培养

1. 将15-20cm 长的新生儿脐带放入无菌的PBS 溶液中储存。(注:4℃下最多贮存24 小时,室温下不超过6 小时,否则废弃) 2. 用一个钝头的针头扎入脐带静脉管中,用无菌的PBS 溶液冲洗3-5 次,将污血冲洗干净为止。 3. 用手术钳夹紧脐带下端,加入15ml 的胶原酶(1mg/ml)室温下消化15-20分钟,并不时上下摇动脐带 4. 消化完后,将下端手术钳松开,消化液流入一个50...

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组织病理实验-冰冻切片

冰冻切片是指将组织在冷冻状态下直接用切片机切片。它实际上是以水为包埋剂,将组织进行冰冻至坚硬后切片的。在冰冻切片前组织不经过任何化学药品处理或加热过程,大大缩短了制片时间。同时,由于此法不需要经过脱水、透明和浸蜡等步骤,因而较适合于脂肪、神经组织和一些组织化学的制片,并作为快速切片的方法应用在临床诊断。 一、 取材 应尽可能快地采取新鲜的材料,防止组织发生死后变化。 二、速冻 ...

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组织病理实验-石蜡切片法

石蜡切片是最基本的切片技术,冰冻切片和超薄切片等都是在石蜡切片基础上发展起来的。苏木素与伊红对比染色法(简称H.E.对染法)是组织切片最常用的染色方法。这种方法适用范围广泛,对组织细胞的各种成分都可着色,便于全面观察组织构造,而且适用于各种固定液固定的材料,染色后不易褪色可长期保存。 一、材料准备: 1.  中性甲醛固定液: 甲醛(37%-40%,市售,本所购买即为此浓度)100 mL ...

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人肿瘤抗原的识别与鉴定实验

一、 裂解细胞 1.  方向刮取细胞。将细胞悬液转移到离心管,离心取沉淀,-80℃ 保存。(收集细胞要迅速,低温下进行,以减弱蛋白酶的作用) 2.  裂解细胞。采用RIPA 裂解体系,使用前40℃ 预冷,按10 7 个细胞加入1.0 ml 裂解液,吹打混匀,加入适量的蛋白酶抑制剂 (如cocktail), 冰上放置3~5 分钟。 ...

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Southern 印迹实验-碱性缓冲液法

用带正电荷的尼龙膜时,如果用碱性转移缓冲液,则转移的DNA可共价结合于膜上。 1.  印迹法中步骤1和歩骤2中所述准备凝胶及用0.25 mol/l HCl处理。 2.  用蒸馏水漂洗凝胶,并用10倍体积的0.4 mol/l NaOH变性,缓慢摇动20 min。 3.  用0.4 mol/l NaOH替代20×SSC作为转移液进行转印。转印时间≥2 h。 ...

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斑点金免疫渗滤测定(DIGFA)实验

斑点金免疫渗滤测定法是在斑点免疫渗滤测定法基础上,改用胶体金标记物代替酶,省去底物显色的步骤。试验方法是以硝酸纤维素膜(NC膜)为载体,将试剂及标本滴加在膜上,通过渗滤而逐步反应。全过程可于数分钟内完成,阳性结果在膜上呈红色斑点。 一、试剂及材料 1.  渗滤装置:为一塑料小盒(4x3x0.6 cm),分为底、盖两层,盖的中央有一个直径0.5 cm的小孔。盒底充填吸水性较强的垫料,盖孔下,紧贴垫料放置一片NC膜。紧闭...

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细胞免疫荧光步骤

细胞爬片免疫荧光实验步骤 第一天: 1. 在培养板中将已爬好细胞的玻片用PBS浸洗3次,每次3min; 2. 用4%的多聚甲醛固定爬片15min, PBS浸洗玻片3次,每次3min; 3. 0.5%Triton X-100( PBS配制 )室温通透20min(细胞膜上表达的抗原省略此步骤); 4. PBS浸洗玻片3次,每次3 min,吸水...

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肿瘤细胞体外传代培养及保种

一、细胞复苏与培养 将液氮或-80℃保存的肿瘤细胞于37℃ 水浴, 快速溶化, 用8.0ml 培养基混匀已融化的肿瘤细胞悬液, 于1500 转/分, 离心3 分钟。弃上清, 再吸取8.0ml 培养基质混匀细胞沉淀, 再1500 转/分, 离心3 分钟, 弃上清, 细胞沉淀用1.0ml 培养基混匀, 备用。另取一个75cm2 方瓶, 加入14.0ml 培养基质, 将上述制备的含肿瘤细胞悬液(1.0ml)加入此方瓶中, 于37℃,5%CO2 孵育...

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