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M13噬菌体衍生载体的制备实验

1.  将来自一个单菌落的过夜培荞新鲜菌液按1 :50稀释,在含有适当抗生素的2×YT培养液(1~5 ml)中,于37℃培养至OD 600 =0.1。 2.  按1,10,20,50 MOI感染细胞,于37℃剧烈振荡下培养4.5 h。 3.  4 000 g 离心10 min,收集上请液并于65℃加热灭活15 min。 4....

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方案16.10 同工酶分析

收集细胞,用 D-PBSA 洗涤,重新制成 5×107个/ml 的细胞悬液,制备细胞抽提物并置于 -70°C 保存。准备凝胶装置,取 1~2μl的细胞抽提物、标准品及对照点样于琼脂糖凝胶。槽内充满液体,将琼脂糖凝胶置于其中,电泳 25 min,加入酶反应试剂,孵育 5~20 min 后,冲洗凝胶,干燥,检査已完成的凝胶酶区带的显示。 一、抽提物的制备 1. 按常规方法培养细胞达 2×10 7 ...

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方案16.11 间接免疫荧光

固定细胞,顺序加入一抗和二抗,通过 UV 光观察。 1. 用 D-PBSA 洗涤长有细胞的盖玻片,置于合适的培养皿中。如 13 mm 盖玻片可用24 孔板。 2. 将培养皿置于 -20°C,10 min,再加入冷的固定剂(5 % 醋酸乙醇溶液(放在 -20°C )),静置 20 min 。 3. 去除固定剂,在 D-PBSA 中洗盖玻片,加入 1 ml 正常猪血清,室温下放置 20 min。 ...

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方案19.1 清洁培养箱

将培养物移至另一培养箱,关闭空培养箱电源,然后用去污剂和乙醇擦洗,开启加热开关,以便使培养箱干燥。盘中换新鲜水,重新通入 CO2。 1. 将全部培养物移至另一个 CO 2 培养箱,或将培养物装入可密封的容器中(如干燥器),通入 CO 2 气体,然后放置于普通培养箱或温室中。 2. 将准备清洁的温箱断开电源。 3. 将温...

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方案19.2 荧光检测支原体

在无抗生素情况下,至少将细胞培养一周,将培养上清转移至处于对数生长早期的指示细胞中,孵育 3~5d ,将细胞固定和染色,寻找细胞核之外的荧光。 1. 将指示细胞(如 3T6,NRK,Vero,A549)接种于培养皿(6 cm 直径)中,不要使用抗生素,接种的细胞数可以在 4~5 天产生50%~60% 的汇合层就足够了(如 2×10 4 NRK或 1×10 5 A549 ...

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单层扁平上皮形态学观察实验

1. 染色: 镀银法,苏木精复染(显示细胞核) 2. 肉眼观察: 肠系膜呈棕黄色,由于铺片厚度不一,故颜色深浅不均。其中血管染成深棕色,粗细不等,纵横交错。 3. 低倍镜观察: 肠系膜表面为单层扁平上皮(间皮)覆盖,间皮细胞紧密连成一片,细胞之间有不规则的深棕色的细线。血管及其分支着色深。选择无血管且染色清晰的部位,移至视野中央,转高倍镜观察。 ...

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单层柱状上皮形态学观察实验

1. 染色:HE 2. 肉眼观察: 标本为小肠横切;管腔内有许多细小的指状突起,突起表面就是要观察的上皮组织所在处。 3. 低倍镜观察: 找到小肠腔面,可见许多长短不一的肠绒毛,表面被覆单层柱状上皮。选择结构清晰的垂直切面,移至视野中央,转高倍镜观察。 4. 高倍镜观察: 上皮细胞呈高柱状,排列紧密而整齐。核呈椭圆形,染...

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方案19.4 消除微生物污染

通过冲洗单层培养物或通过离心重悬非贴壁细胞,以高浓度抗生素清洗培养物数次,然后将培养物传代,用加抗生素的培养基传三次,再用不加抗生素的培养基传三次,每次传代后都要检测是否污染。 一般的原则是应将污染的培养物丢弃,而不要试图去除污染,除非是至关重要必须保留的细胞系才考虑去除污染。在任何情况下,很难做到完全消除污染。特别是在酵母污染时,如果试图去除污染,可能导致产生更顽固的对抗抗生素的细胞。 1. 仔细收集污染培养液,如有可能,应测试该有机体...

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哺乳动物中制备基因组DNA实验

1.  切下组织并立即剪成小块,置于液氮中冻结。 2.  将200 mg~1 g 的组织用预冷的研钵和研杵研碎,或用锤子将其捣为细粉末,每100 mg 组织用1. 2 ml 消化缓冲液悬浮。 3.  500 g 离心细胞5 min,弃上请。贴壁生长细胞先用胰酶消化。 4.  细胞用1~10 ml 冰冷的PBS重悬,500 g 离心5 min,弃上清,重复1次。 5....

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