1. 染色：瑞特氏（Wright’s）法 刺破耳垂或指尖，取血一滴，置玻片上，用另一玻片以30度角将血液推成厚薄均匀之涂片。干燥后，用瑞特氏染液数滴加于涂片上，再加蒸馏水，然后水洗至粉红色，干后即可观察。瑞氏染液用美蓝和伊红混合配制而成，其中部分美蓝氧化成为天青。染色后，对碱性染料美蓝有亲和力的部位呈蓝色；对酸性染料伊红有亲和力者呈鲜红色；对天青有亲和力者呈紫红色；对酸性染科和碱性染科都没有较强亲和力者则着色轻微，呈淡红色或淡紫色。 ...

1. 染色：HE 2. 肉眼观察： 标本为气管横切面，其中有蓝色"C"字形的透明软骨。 3. 低倍镜观察： 找到染成蓝色的透明软骨，逐项观察如下结构： （1） 软骨膜：位于透明软骨表面（注意是在整个软骨组织的周围），由致密结缔组织构成，外层纤维较内层多。 （2）透明软骨组织：基质染成蓝色，但着色深浅不一，靠近软骨细胞的部...

一、切除附睾脂肪垫 1. 在充有 70 % CO 2 和 30 % O 2 混合气体的塑料箱内麻醉大鼠（雄性 Sprague-Dawley 大鼠：145~170 g，CD 系（Charles RiverBreeding Laboratories）。 2. 用铡刀断头放血。 3. 将鼠体在 70 % ...

1. 染色：乙醛复红 肉眼观察： 此种标本颜色深浅不一，可见许多染色较深的细丝。 2. 低倍镜观察： 纤维交叉成网，细胞散在于纤维之间。选择着色浅的部位，转高倍镜观察。 3. 高倍镜观察： 注意分辨两种纤维和两种细胞。 （1） 胶原纤维：数量多，染成粉红色。纤维粗大，有分支，在自然松弛状态下呈波...

取出前列腺和处理标本（30 min），用胶原蛋白酶消化前列腺组织（1 h），收集单个细胞和小的细胞团（1 h）。接种细胞，培养至形成单层（7 d）。 1. 在无菌条件下，取出理想的前列腺叶，放入灭菌过的 60 mm Petri 培养皿（玻璃或塑料的，直径为 60 mm）。 2. 剪除前列腺叶的脂肪，然后称重。 3. 加入 2 ml 胶原蛋白酶（675 U/ml，用含有 100 U/ml 青霉素和 100 μg...

1. 染色：HE 2. 肉眼观察： 标本是收缩状态的膀胱，着紫蓝色的一侧是膀胱腔面的变移上皮。 3. 低倍镜观察： 变移上皮由多层细胞构成，各层细胞形态不一。上皮游离面与基底面基本平行，基膜不明显。 4. 高倍镜观察： 从深面向浅层观察各层细胞的形态。 （1） 基底层：为一层矮柱状细胞。 ...

一、原代培养 1. 取手术切除或早期活检组织，将组织放入转运培养液（Leibowitz L-15培养液，添加 100 μg/ml 庆大霉素、100 U/ml青霉素、100 μg/ml 链霉素和 1μg/ml两性霉素B），尽快送到实验室。 2. 将组织移入 100 mm 培养皿，用 P-PBSA （不含 Ca 2+ 和 Mg 2+ ...

1. 染色：HE 2. 肉眼观察： 标本为食管横切面，管腔呈不规则形，靠近腔面呈紫蓝色的部位为复层扁平上皮。 3. 低倍镜观察： 在食管横切面上所观察到的是复层扁平上皮的垂直切面。可见复层鳞状上皮和下方的部分组织向管腔形成突起（实为立体结构下的纵形皱襞）。复层扁平上皮由多层细胞构成，各层细胞形状不一。上皮与深面结缔组织的交界起伏不平，两者之间隔以基膜。基膜呈均匀的粉红色。...

1.  切下组织并立即剪成小块，置于液氮中冻结。 2.  将200 mg~1 g 的组织用预冷的研钵和研杵研碎，或用锤子将其捣为细粉末，每100 mg 组织用1. 2 ml 消化缓冲液悬浮。 3.  500 g 离心细胞5 min，弃上请。贴壁生长细胞先用胰酶消化。 4.  细胞用1~10 ml 冰冷的PBS重悬，500 g 离心5 min，弃上清，重复1次。 5....

通过冲洗单层培养物或通过离心重悬非贴壁细胞，以高浓度抗生素清洗培养物数次，然后将培养物传代，用加抗生素的培养基传三次，再用不加抗生素的培养基传三次，每次传代后都要检测是否污染。 一般的原则是应将污染的培养物丢弃，而不要试图去除污染，除非是至关重要必须保留的细胞系才考虑去除污染。在任何情况下，很难做到完全消除污染。特别是在酵母污染时，如果试图去除污染，可能导致产生更顽固的对抗抗生素的细胞。 1. 仔细收集污染培养液，如有可能，应测试该有机体...