动物细胞培养基础技术——第二章 培训纲要-练习5:玻璃器皿的清洗和灭菌
目的 清洗和灭苗污染的玻璃器皿。 训练目标 正确的准备工作和无菌区外的质呈控制。 监督:推荐有经验的清沽工带实习生熟悉标准程序。 时间:每次20~3omm较合适,所花的时间取决于实习生最后所参与岗位的程度和监督者的判断。 背景信息 洗刷区(见4.5.2节);清洗(见5.4.1...
查看详情目的 清洗和灭苗污染的玻璃器皿。 训练目标 正确的准备工作和无菌区外的质呈控制。 监督:推荐有经验的清沽工带实习生熟悉标准程序。 时间:每次20~3omm较合适,所花的时间取决于实习生最后所参与岗位的程度和监督者的判断。 背景信息 洗刷区(见4.5.2节);清洗(见5.4.1...
查看详情目的 清洗和灭苗污染的玻璃器皿。 训练目标 正确的准备工作和无菌区外的质呈控制。 监督:推荐有经验的清沽工带实习生熟悉标准程序。 时间:每次20~3omm较合适,所花的时间取决于实习生最后所参与岗位的程度和监督者的判断。 背景信息 洗刷区(见4.5.2节);清洗(见5.4.1...
查看详情目的 给单层细胞换新鲜培养纂。 应用 用于给快速生长的培养物在传代之间更换培养基,或从一种类型培养基换成另一种培养幕, 训练目标 加强无菌操作技巧.介绍细胞维持的一个基本原理,即在持续培养周期中更换培养基。让实习生观察培养基并明白耗竭培养基的特征.例如细胞密度和(或)pH降低,并观察有没有污染.r解交叉污染的风险。比较冷藏的培...
查看详情目的 操作已灭菌溶液时保持无菌状态。 训练目标 无菌操作:练习灵巧和无菌的操作。 监督:连续监督。 背景信息 无菌技术的目标(见 6.1 节);无菌环境的要素(见 6.2 节);无菌操作(见 6.3 节).在层流超净台中工作(见 6.4节);可见的微生物污染物(见 19.3.1 节). 示范材料和操...
查看详情目的 快速准确地将液体从一个容器转移到另一个容器。 训练目标 熟练掌握吸管的使用,掌握必要的速度、准确性和精度。 监督:开始时连续监督,然后让实习生重复练习并记录准确度。 时间:30 min~ l h。 背景信息 已灭菌液体的操作(见 5.2.7 节);试剂瓶和培养瓶的操作(...
查看详情目的 细胞培养的评判性检查。 应用 检查常规维持的一致性;在复苏、传代、冻存前培养状况的评估;对新的或实验性 情形反应的评估;确认明显的污染物。 训练目标 熟悉不同类型和不同密度的细胞培养的外观;数码或胶片相机的使用;灭菌物品和污染物间的区别,健康的和不健康的培养物间的 区别;培...
查看详情目的 快速准确地将液体从一个容器转移到另一个容器。 训练目标 熟练掌握吸管的使用,掌握必要的速度、准确性和精度。 监督:开始时连续监督,然后让实习生重复练习并记录准确度。 时间:30 min~ l h。 背景信息 已灭菌液体的操作(见 5.2.7 节);试剂瓶和培养瓶的操作(...
查看详情本书的设计初衷是提供组织培养操作程序的信息手册,同时提供一些实际方案中的背景资料和操作过程中的原理解释。无论如何,有必要为人们提供一本组织培养技术培训的教程。一个独立的工作者可以根据他的需要来阅读本书的某些部分;经验有限的学生或正在接受培训的技术员,则可根据其以往经验和导师的要求从中获得推荐的训练教 程。编写这一章的目的即是为培训新手的教师提供初级或高级水平的教程。 这一教程由一系列标准格式的练习组成,包括相互参考的操作程序和背景知识。在练习中不会重复...
查看详情1. 取肝素或EDTA抗凝全血(100μl/份),置12×75mm专用塑料试管中。 2. 加入50μl特异的单克隆抗体(一抗),室温下孵育30min。 3. 置Q-PREP仪上溶解红细胞,稳定和固定白细胞。 4. 离心(800~1000rpm,5min)弃上清液,用PBS洗涤细胞2次。 5. 加入50μl荧光(FITC或PE)标记的第二抗体,室温下避光染色30min。 ...
查看详情目前制备全血细胞样品的方法很多,且很成熟,常用的方法是用淋巴细胞分离液分离淋巴细胞,然后进行特异性荧光染色,其染色方法与前面介绍的方法相同。下面主要介绍与流式细胞仪配套的Q-PREP(免疫学样品处理器)进行快速制备微量全血样品的方法。 1. 取肝素或EDTA抗凝全血(100μl/份),置12×75mm专用塑料试管中。 2. 每份加入20μl特异性荧光单抗,另一份加入荧光标记的无关单抗作同型对照,室温下避光染色15min。 ...
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